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发布日期:2026/10/20 16:20:00

1. 产品概述

Brefeldin A (BFA) 是一种小分子ATPase抑制剂(目录号:KM10671),其IC50值约为0.2μM。BFA通过阻断蛋白质从内质网(ER)向高尔基体的运输,并抑制关键的GTP/GDP交换循环,从而发挥其生物学活性。该化合物是研究内质网应激通路、细胞凋亡诱导(尤其是在结直肠癌和乳腺癌模型中)以及囊泡运输机制的常用工具。

目录号: KM10671

靶点:ATPaseIC50值约为0.2μM

 

项目

说明

溶解性

不溶于水,但易溶于乙醇和DMSO

高浓度配制

对于更高浓度的储备液,建议37°C温和加热并辅以超声震荡,以确保完全溶解

储备液分装

将储备液分装成小份,储存于< -20°

冻融

避免反复冻融,解冻后应尽快使用;不建议长期储存已配制好的工作液

注意:稀释到水性培养基前,务必通过肉眼确认BFA已完全溶解,否则可能导致后续实验中出现沉淀。

2.作用原理

BFA通过以下机制发挥其生物学效应:

1. 阻断囊泡运输:抑制ATP介导的囊泡胞吐作用,阻碍蛋白质分泌。

2. 诱导内质网应激:通过干扰ER-高尔基体运输,引发内质网应激反应。

3. 上调p53表达:在内质网应激的背景下,BFA可增强p53表达,进而促进肿瘤细胞(如MCF-7、HeLa、HCT116)的凋亡。

4. 干扰高尔基体结构与细胞骨架:破坏高尔基体结构及细胞骨架组织,影响细胞迁移和转移。

其他机制:

癌症与血管生物学:BFA可破坏高尔基体结构和细胞骨架,用于研究细胞迁移和转移。在MDA-MB-231乳腺癌模型中,BFA能有效抑制克隆活性和迁移;在HCT116结直肠癌细胞中,BFA通过上调p53和激活caspase通路触发强烈的细胞凋亡。

内皮损伤与脓毒症模型:BFA可作为囊泡运输抑制剂,用于模拟内皮高通透性和血管功能障碍相关的分子级联反应,研究moesin、NF-κB及细胞骨架重排等通路。

3.细胞培养与处理流程

3.1 细胞铺板

将细胞(如MCF-7、HeLa、HCT116或原代内皮细胞)接种至培养器皿中,使处理时的细胞融合度达到70–80%。

3.2 BFA处理

工作浓度:在培养基中将BFA稀释至0.1–5μM(常用范围)。

处理时间:根据细胞敏感性和实验目的,处理时间可在2–24小时之间调整。

关键提示:将BFA储备液逐滴加入预热的培养基中,同时涡旋混匀,以最大限度地减少沉淀。

实测数据:

ATPase抑制的IC50约为0.2μM,在亚微摩尔浓度下即可有效阻断ER-高尔基体运输。

在HCT116结直肠癌细胞中,2μM BFA处理24小时后,细胞凋亡率可超过60%,同时伴随p53上调和caspase-3剪切。

在内皮细胞模型中,BFA暴露2–6小时内即可观察到显著的内质网肿胀和细胞骨架破坏。

注意:

溶剂对照:使用等体积的DMSO或乙醇。

阳性对照:内质网应激可选衣霉素(目录号; KM19720) 或毒胡萝卜素(目录号: KM9375);凋亡诱导可选星形孢菌素(目录号:KM7456)。

检测指标

检测目的 检测方法 结果

蛋白质分泌分析

ELISA 或 Western blot

BFA处理通常导致分泌蛋白水平显著下降,验证其对ER→高尔基体运输的抑制作用

内质网应激标志物

免疫印迹或 qPCR 检测 BiP/GRP78、CHOP、XBP1剪接

这些标志物上调表明内质网应激被成功诱导

凋亡读数

Caspase-3/7活性检测、Annexin V/PI染色、p53表达水平

用于量化癌细胞中的凋亡诱导程度

细胞迁移与克隆形成

划痕实验、Transwell迁移实验、克隆形成实验

评估BFA对乳腺癌细胞迁移的抑制作用及对干性的影响

 

常见问题与解决方案

问题 可能原因 解决方案

溶解不完全

溶剂选择不当或未充分辅助溶解

将温度升至37°C并辅以超声震荡;稀释前务必肉眼确认溶解状态

培养体系中出现沉淀

储备液加入速度过快或培养基温度过低

将BFA储备液逐滴加入预热的培养基中,同时涡旋混匀;必要时可过滤除菌,但避免长时间受热或光照

细胞毒性过强

BFA效力极高,浓度超出细胞耐受范围

根据细胞系敏感性滴定浓度;浓度超过5 μM时,可能出现与内质网应激通路无关的非特异性细胞毒性

批次间结果不稳定

BFA在溶液中不稳定(尤其在室温下)

每次实验新鲜配制工作液;对于多天实验,交错安排BFA加入时间并平行处理样本,以减少化合物降解带来的变异

本手册内容基于公开研究资料整理,仅供实验参考。具体实验条件需根据所用细胞系和实验体系进行优化调整。

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